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硫化水素研究用試薬およびキット

 近年、毒ガスとして知られている硫化水素(H2S)が、血管拡張や細胞保護、インスリン分泌や神経伝達調節など様々な生理活性を示すことが明らかにされ、一酸化窒素(NO)や一酸化炭素(CO)に続く第 3 のガス状シグナル分子として注目されています。
 生体内に存在する硫化水素は、主に L-システインを基質としてシスタチオニンβ-シンターゼ(CBS)やシスタチオニンγ-リアーゼ(CSE)、 3-メルカプトピルビン酸サルファトランスフェラーゼ(3-MST)などの酵素類によって産生され、生理活性を示すと共に、システイン側鎖の SH 基に付加した結合型硫黄として生体内に貯蔵されると考えられています。硫化水素は、NO や CO と同様にガス状分子として認知されていますが、その pKa は約 7 であり、生理的 pH では約 80% が硫化水素イオン(HS-)の状態で存在します。また、硫化水素イオンは生体内で様々な結合形態や構造をとるため、その作用機序の詳細は未だ不明であり、硫化水素を中心とした硫黄の生体内機能の解明が待ち望まれています(概略に関しては、ドージンニュース 146 号「生理活性物質としての硫化水素」をご参照ください)。
 小社では現在、このような研究背景の中、硫化水素研究に有用な試薬およびキットの開発を行っております。ご興味、ご要望などありましたら、お気軽に小社までお問合せ下さい。

硫化水素イオン比色定量用キット(メチレンブルー法)

<特長>
 ・比色法により硫化水素を定量することができる
 ・マイクロプレートを用いた多検体測定が可能
 ・酸に不安定な結合型硫黄の影響を受けない

 メチレンブルー法は、最も一般的な硫化水素イオン定量法の一つです。本手法は、酸性条件、塩化鉄(V)存在下で N,N-dimethyl-p-phenylenediammonium と硫化水素が反応してメチレンブルーを生成する機構に基づいており、生成したメチレンブルー由来の 650 nm 付近の吸光度から硫化水素を定量することができます 1)
ただし、本手法は酸性条件下で反応を行うため、生体試料中に含まれる酸に不安定な結合型硫黄由来の硫化水素の反応への関与が示唆されており、実際の生体内硫化水素の絶対定量には適していないと考えられています。そこで小社では、このような結合型硫黄の影響を受けず、遊離の硫化水素イオンを特異的に検出できるキットの開発を行っております。

【キット内容】
・Na2S Standard
・1% Zinc Acetate
・DPDA
・FeCl3 Solution
×1
×1
×2
×1


 

硫化水素 HPLC 検出用キット(monobromobimane 法)

<特長>
 ・monobromobimane を用いた高感度 HPLC 検出が可能
 ・標準物質である Sulfide-dibimane を付属

 Monobromobimane を用いた HPLC 分析法は、最も高感度で汎用性の高い硫化水素検出法として利用されています。 Monobromobimane は、チオール特異的蛍光ラベル化剤であり、硫化水素 1 分子に対し、Bimane 2 分子が標識された特異的な化合物(Sulfide-dibimane)を生成します。そのため、グルタチオンやシステインなどの他のチオール基を有する物質との分離が可能であり、また生成した化合物が蛍光を有するため、蛍光検出による高感度分析ができます 3-5)。また、最近では質量分析装置と併用することでさらに高感度化と高選択性を達成した方法が報告され、硫化水素だけではなく、SH 基を有する種々の生体物質の詳細な解析法として確立されつつあります 2, 6)
 本キットには、反応に必要な試薬類および標準物質である Sulfide-dibimane が含まれています。

【キット内容】
・Monobromobimane
・Reaction buffer
・Sulfide dibimane
×3
×1
×1


硫化水素 生体硫黄マップと試薬選択ガイド

硫化水素関連製品群をマップで紹介しています。お役立てください。


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[参考文献]

1) N. S. Lawrence, J. Davis and R. G. Compton, Talanta, 2000, 52, 771.

2) T. Morikawa, M. Kijimura, T. Nakamura, T. Hishiki, T. Nakanishi, Y. Yukutake, Y. Nagahata, M. Isikawa, K. Hattori, T. Takenouchi, T. Takahashi, I. Ishii, K. Matsubara, Y. Kabe, S. Uchiyama, E. Nagata, M. M. Gadalla, S. H. Snyder and M. Suematsu, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2012, 109, 1293.

3) G. L. Newton, R. Dorian and R. C. Fahey, Anal. Biochem., 1981, 114, 383.

4) E. A. Wintner, T. L. Deckwerth, W. Langston, A. Bengtsson, D. Leviten, P. Hill, M. A. Insko, R. Dumpit, E. Van den Ekart, C. F. Toombs and C. Szabo, Br. J. Pharmacology, 2010, 160, 941.

5) X. Shen, C. B. Pattillo, S. Pardue, S. C. Bir, R. Wang and C. G. Kevil, Free Radic. Biol. Med., 2011, 50, 1021.

6) M. Nishida, T. Sawa, N. Kitajima, K. Ono, H. Inoue, H. Ihara, H. Motohashi, M. Yamamoto, M. Suematsu, H. Kurose, Albert van der Vliet, B. A. Freeman, T. Shibata, K. Uchida, Y. Kumagai and T. Akaike, Nat. Chem. Biol., 2012, 8, 714.